K252a对内毒素诱导急性肺损伤大鼠的保护作用

作者:张茂银,陈龙,成勤,张稳稳,刘苏,王光磊,刘功俭。

【摘要】 目的 观察K252a(MLK3阻断剂)对内毒素急性损伤大鼠肺病理组织学改变及生存率的影响。方法 采用尾静脉注射脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)复制内毒素急性损伤模型。90只大鼠随机分为6组(n=15):对照组(control组)、LPS 组、K252a 50 μg/kg组(K50组)、K252a 75 μg/kg组(K75组)、K252a 100 μg/kg组(K100组)和溶剂对照组(DMSO组)。模型制备成功后6 h取肺脏进行光镜检查,观察48 h内大鼠死亡情况并比较累计生存率。结果 48 h内LPS组、K50组、K75组和K100组以及DMSO组大鼠生存率分别为6.3%、27%、72%、57%及6.7%。光镜下可见LPS组大鼠肺组织结构明显被破坏,主要表现为肺泡内出血、肺间质水肿、肺泡萎陷以及肺组织内大量炎性细胞浸润。与LPS组相比,预先应用K252a组肺组织的损伤程度较轻微、肺间隔轻度增宽、无明显出血、少量炎性细胞浸润,尤其K75组,减轻程度最明显。结论 K252a延迟LPS大鼠死亡时间,并呈现剂量依赖性,75 μg/kg K252a剂量可以明显提高其生存率。并可改善内毒素急性损伤大鼠肺脏的病理组织学结果。

【关键词】 K252a;MLK3;内毒素;急性损伤大鼠;生存率

急性损伤(acute lung injury,ALI)/急性呼吸窘迫综合征(acute respiratory distress syndrome,ARDS)是临床常见的危重病,是重症监护治疗的重要课题。其本质是以炎症介质过度释放为特征的肺部广泛炎症反应[1]。由于ALI/ARDS病因与发病机制的复杂性,近年来尽管进行了大量的研究,但其病死率仍居高不下[2]。因此深入了解并研究ALI/ARDS的发病机制,具有重要意义。本实验采用大鼠静脉注射LPS复制内毒素急性损伤模型, 应用p38MAPK上游MLK3的抑制剂K252a对内毒素急性损伤大鼠进行干预, 观察其对大鼠肺脏病理组织学改变及生存时间的影响, 旨在探讨K252a对急性损伤有无保护作用,从而为抗炎治疗增添一条新的途径,还有助于寻找对ALI/ARDS更有效的治疗方法。

1 材料和方法。

1.1 实验动物及试剂 成年雄性SD大鼠,体重200~250 g,购自中国科学院上海实验动物中心。LPS(E.coli,011:B4)、K252a、DMSO(dimethyl sulfoxide,二甲基甲酰胺)均购自美国Sigma公司。

1.2 模型制备和分组 实验动物随机分为6组(n=15):对照组(Control组),仅注射生理盐水;LPS组,经尾静脉注射LPS 5 mg/kg;K252a 50 μg/kg组(K50组)、K252a 75 μg/kg组(K75组)和K252a 100 μg/kg组(K100组),分别在注射LPS前30 min尾静脉注射K252a 50 μg/kg、75 μg/kg、100 μg/kg;溶剂对照组(DMSO组)在注射LPS前30 min尾静脉注射DMSO 0.2 ml。本实验中所选用药物剂量及给药方式是依参照文献[3]、[4]及我们的预实验结果而定。

1.3 病理学检查 注射LPS后6 h取适量肺组织,经4%甲醛溶液固定,梯度乙醇脱水、石蜡包埋、切片,苏木精—伊红染色后,光镜下观察病理改变。

1.4 生存率分析 为了证实K252a对急性损伤的保护作用,观察各组大鼠48 h内的生存情况。

1.5 统计学分析 所有数据均以±s表示,统计分析采用单因素方差分析(ANOVA)和Student′s t检验。死亡率分析采用Kaplan—Meier检验。P0.05认为有统计学意义。所有统计均由SPSS13.0统计软件处理完成。

2 结 果。

2.1 病理学检查 见图1。与对照组相比,LPS组大鼠肺组织的结构破坏明显,主要表现为肺泡内出血、肺间质水肿、肺泡萎陷以及肺组织内大量的炎性细胞浸润(图1—B)。与LPS组相比,预先应用K252a各组大鼠肺组织的损伤程度减轻,表现为肺间隔轻度增宽、无明显出血、少量炎性细胞浸润(图1—D、1—E、1—F),尤其K75组,减轻程度最明显。

2.2 生存率分析 见表1。与LPS组相比,K75组的生存率明显提高(P0.05),而DMSO组与LPS组之间的生存率差异无显著性。这表明K252a能够限制LPS的致死率,尤其是75 μg/kg剂量组。表1 各组平均生存时间及生存率比较。

3 讨 论。

ALI/ARDS的发生发展是一个复杂的过程,涉及了许多信号转导途径。在以往的研究中,人们都将注意力放在NF—κB信号通路上,因为该通路可以诱导多种炎性细胞因子的表达。然而,ALI/ARDS发生发展是一个复杂的过程,涉及了许多信号转导过程,不仅有NF—κB信号通路,还有许多其他激酶通路。近年来,大量的离体研究显示,丝裂原活化蛋白激酶(mitogen—activated protein kinase,MAPK)家族均参与调节了炎性介质的产生,且参与了机体炎症反应的发生与发展。如p38MAPK、c—Jun氨基末端激酶(JNK)、细胞外信号调节激酶(ERK)等,其中,p38MAPK被认为是在应激信号传递中最重要的调节者之一,在调节细胞的凋亡以及细胞因子的产生中发挥着重要的作用。Kim等[5]曾报道p38MAPK参与调节了人肺血管内皮细胞中TNF—α诱导的IL—8的产生。还有证据显示p38MAPK参与了。

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