肿瘤抗原致敏DC诱导T淋巴细胞增殖及杀伤效率

作者:赵增仁,李勇,田延峰,张丽静,张峰,李芳 【摘要】目的:探讨胃癌细胞抗原致敏的树突状细胞(DC)诱导T淋巴细胞(Tlymphocyte)增殖和杀伤胃癌细胞的效率.方法:应用淋巴细胞分离液分离人外周血单个核细胞,经重组人粒细胞巨噬细胞集落刺激因子(rhGMCSF)、重组人白细胞介素4(rhIL4)和肿瘤坏死因子α(TNFα),体外诱导培养获取成熟DC,流式细胞检测DC表面CD83,CD80,CD86及HLADR表型;同时经重组人白细胞介素2(rhIL2)诱导扩增T淋巴细胞检测CD3,CD4,CD8及CD56表型.以人胃癌OCUM2MD3细胞株冻融抗原致敏DC,然后刺激T淋巴细胞,得到肿瘤抗原特异的细胞毒性T淋巴细胞(CTL).MTT法检测致敏DC对T淋巴细胞增殖的影响和致敏DC活化的特异性CTL对胃癌细胞的体外杀伤效率.结果:体外诱导外周血单个核细胞,可获得大量形态典型、具备强烈刺激增殖能力、且高表达CD80,CD86的DC及高表达CD3的T淋巴细胞;MTT法检测结果发现胃癌细胞抗原致敏DC组刺激T淋巴细胞增殖指数显著高于未致敏DC组和对照组(P0.01);流式细胞检测结果发现胃癌细胞抗原致敏DC主要刺激T淋巴细胞增殖为CD8+的CTL(60.58±8.43)%,经胃癌细胞抗原致敏DC刺激后,对胃癌细胞杀伤效应显著增加,致敏DC组对胃癌细胞杀伤活性(71.57±4.83)%,较未致敏DC组(12.53±1.62)%和单纯T淋巴细胞组(10.45±1.40)%作用更为显著(P0.01),而且随着效靶比增加,其杀伤效应亦显著增加.结论:胃癌细胞抗原致敏DC可显著刺激T淋巴细胞增殖为CD8+CTL,进而发挥其高效杀伤胃癌细胞的作用. 【关键词】树突细胞;T淋巴细胞;胃肿瘤;T淋巴细胞细胞毒性   0引言   树突状细胞(dendriticcells,DC)是专职的抗原提呈细胞,与机体抗肿瘤免疫关系密切[1].DC加工处理提呈抗原信息后,通过激活T淋巴细胞而发挥抗肿瘤细胞的免疫效应.研究[2]表明,各种人DC前体细胞如脐血、骨髓及外周血CD34+细胞或CD14+细胞等在联合应用GMCSF,IL4,TNFα等因子体外培养下,均可诱导成为成熟DC.在多种肿瘤的临床试验中,发现DC免疫治疗具有一定的效果[3].我们以人外周血为DC来源,利用胃癌细胞冻融抗原致敏DC,观察其诱导细胞毒性T淋巴细胞(cytotoxicTlymphotytes,CTL)对胃癌细胞杀伤效率,为DC治疗胃癌提供实验依据.   1材料和方法   1.1材料人胃癌高侵袭OCUM2MD3细胞株,由日本大分医科大学外一科八代正和教授惠赠.外周血取自健康志愿者.重组人粒细胞巨噬细胞集落刺激因子(rhGMCSF),重组人白细胞介素4(rhIL4),白细胞介素2(rhIL2)和重组人肿瘤坏死因子α(rhTNFα)(美国Cytolab公司);抗人CD3PE,CD4PE,CD8PE和CD56PE(美国BectonDickinson公司);四甲基偶氮唑蓝(美国Sigma公司);抗人CD83PC5,CD86PE,CD80FITC和HLADRFITC(美国BECKMANCOUNTER公司).   1.2方法   1.2.1DC分离培养及鉴定应用淋巴细胞分离液分离人外周血单核细胞,以rhGMCSF和rhIL4诱导培养5d后,加入TNFα,于第7日收集DC,光镜及电镜下观察其形态.同时分别加入荧光标记的CD83PC5,CD80FITC,CD86PE和HLADRFITC,间接免疫荧光染色,采用文献[4]的方法,流式细胞检测DC表面CD83,CD80,CD86及HLADR表达.   1.2.2胃癌细胞冻融法制备抗原致敏DC胰蛋白酶消化、吹打收集对数生长期的人胃癌OCUM2MD3细胞,调整细胞数为2×107/mL.将人胃癌OCUM2MD3细胞以液氮反复冻融法[5]制备肿瘤抗原.DC培养至第5日加入胃癌细胞抗原,第7日加入TNFα,第8日收获胃癌OCUM2MD3细胞抗原致敏的DC.   1.2.3MTT法检测致敏DC诱导T淋巴细胞增殖将胃癌细胞抗原致敏DC,未致敏DC和T淋巴细胞,经60Co照射灭活,分别取1×103,3×103,1×105接种于96孔培养板,分为致敏DC组、未致敏DC组和T细胞组.每孔加入1×105T淋巴细胞,终体积为200μL.混合培养96h后,加入MTT溶液20μL,继续静置培养4h后,吸弃培养基,加入DMSO150μL,均匀震荡混匀10min,自动酶标仪于波长492nm处测定吸光度A值,空白培养基孔作为对照,按下面公式计算刺激增殖指数(SI).SI=各刺激组孔A492nm/空白孔A492nm.   1.2.4MTT法检测CTL对胃癌细胞的体外杀伤效应将负载胃癌抗原DC,未负载胃癌抗原DC分别取2×104个细胞与T淋巴细胞混合后及单纯T淋巴细胞置于48孔培养板上,分为致敏DC组、未致敏DC组、T细胞组,以人胃癌OCUM2MD3细胞为靶细胞,另设单独效应细胞组和单独靶细胞组.按效靶比10∶1,20∶1,40∶1加入人胃癌OCUM2MD3细胞培养液,静置培养24h.每孔加入MTT溶液200μL,孵育4h后全自动酶标仪于492nm波长处测定A值.杀伤活性按下式计算:杀伤活性(%)={1[(实验组A值—单独效应细胞组A值)/单独靶细胞A值]}×100%.   1.2.5流式细胞检测T淋巴细胞表型收集T淋巴细胞(T细胞组)和经胃癌细胞抗原致敏DC刺激扩增的T淋巴细胞致敏DC组),制备单细胞悬液,调整细胞数为5×106/mL,加入藻红蛋白标记的CD3,CD4,CD8及CD56荧光抗体孵育30min后,流式细胞检测CD3,CD4,CD8及CD56的表达量.   统计学处理:数据结果以x±s表示,选用SPSS11.5统计软件,采用t检验和方差分析进行统计分析,P0.05为差异具有统计学意义.   2结果   2.1体外培养的DC形态人外周血单个核细胞经rhGMGSF,rhIL4联合诱导7d后,光镜下观察细胞表面有毛刺状突起;扫描电镜(SEM)观察DC表面粗糙,胞体向四周伸出大量树枝状或裙褶状不规则突起,有的突起末梢呈球状膨大,众多突起甚至遮盖了胞体,充分展示出DC的典型形态特征;透射电镜(TEM)下成熟DC的胞体较大,可见明显的突起,胞浆细胞器较发达(图1).   2.2DC细胞表型分析培养7d时,收获的细胞以成熟DC为主.流式细胞检测DC表面CD83,CD80,CD86及HLADR表型,结果发现CD80,CD86的阳性细胞比率分别为(43.81±6.19)%和(51.07±4.32)%,CD83阳性细胞比率可达(61.94±5.87)%,HLADR达(72.26±7.65)%(图2).   2.3T淋巴细胞胃癌细胞抗原致敏DC刺激前后改变获得T淋巴细胞于镜下观察可见细胞体积较小呈圆形,符合典型淋巴细胞的形态.经胃癌细胞抗原致敏DC刺激后,T淋巴细胞形态无明显变化,数量明显增多,流式细胞检测其CD3的表达率为(99.45±0.35)%(图3).   A:光镜下见DC表面有毛刺状突起×400;B:扫描电镜下见DC表面有大量皱褶和树状突起×3500;C:透射电镜下见DC表面有明显突起,胞浆细胞器较发达×3500.   图1培养7dDC形态(略)   图2DC表面分子表型(略)   A:DC刺激前T淋巴细胞;B:DC刺激后T淋巴细胞.   图3T淋巴细胞变化×200(略)   2.4胃癌细胞抗原致敏DC对人外周血T淋巴细胞增殖的影响MTT检测结果显示,致敏DC组SI值为(57.3±11.5)%,显著高于未致敏DC组(18.3±7.4)%,T细胞组(18.5±2.6)%和对照组(17.6±5.3)%,差异具有统计学意义(P0.01).未致敏DC组、T细胞组和对照组之间差异无统计学意义(P0.05).

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