不同浓度植物营养剂对观赏菊组培苗产生的影响的原因分析
菊花（Dendranthema morifolium）为菊科菊属多年生宿根草本植物或半灌木，是中国十大名花之一，在中国已有3 000多年的栽培历史。
菊花具有极高的观赏价值，花型与颜色非常丰富，因此菊花的市场很广阔。
目前，菊花的主要繁殖方法有扦插繁殖、分株繁殖、压条繁殖、嫁接繁殖等[1—4]，这些方法均存在一定程度的缺点与不足，主要表现为繁殖速度不快、病虫害发生频率高、易受季节变化影响等，利用组织培养技术进行菊花的快速繁殖，则可有效解决上述问题，已逐渐成为菊花繁殖的重要方法与手段。
但是这些方法繁殖系数小，远远不能满足市场的需要。
随着生物技术的发展，出现了组织培养技术。
组织培养具有增殖效率高、繁殖速度快的特点，能够在短时期内生产出大量的试管苗，大大提高了菊花的繁殖速度。
因此，为提高观赏菊组培苗的成活率，必须在炼苗期促进组培苗的生根，提高光合作用效率，增强其抗逆性。
植物营养剂[5—7]是一种以海洋生物、多种植物为基础原料，采用现代生物工程的方法，经提炼浓缩，加入农作物所需的营养素，且保持生物活性等而制成的一种有机质液态叶面肥，能够为作物提供生长期所需要的营养元素及促生长因子，能促进作物生根，提高其光合作用及抗逆性。
对不同的果蔬和谷物具有增产和改善品质等作用。
2011年8月至2012年10月在长沙学院生物试验基地进行了不同浓度的植物营养剂对观赏菊成活率的影响试验，旨在筛选出一种对组培苗成活率具有提升作用的最佳使用浓度，为观赏菊组培苗优质生产提供理论依据和科学数据。
毕业论文 1 材料与方法 1.1 试验材料 供试菊花品种为银球，选取长势良好、无病害、健康的嫩菊花茎段作为组织培养的材料，用自来水冲洗并轻刷材料，在超净工作台内，用75％乙醇浸泡30 s，再用0.1％升汞消毒8~10 min，无菌水漂洗4~6遍，用无菌滤纸吸干水分，然后剪成含有1个腋芽的茎段转入培养基。
1.2 试验方法 1.2.1 培养基的选择。
将菊花外植体经消毒处理后接种到诱导萌芽培养基中诱导愈伤组织的生成，并分化出丛生芽。
采用不同的菊花生芽诱导培养基进行对比试验：MS+6—BA 2.5 mg/L+NAA 0.5 mg/L（A1）、MS+6—BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L（A2）、MS+6—BA 0.3 mg/L+NAA 0.1 mg/L（A3）。
继代培养是组培快繁获得大量无根苗的重要环节，丛生芽每月的分化增值率可达5~10倍，如果每3~4周分割转瓶1次，经多次继代后，就能够迅速获得大量的无根苗。
将菊花的丛生芽切割分离成单株，移至增殖培养基中大量增殖，以作为后续试验材料。
采用了3种不同浓度的增殖培养基进行对比试验：MS+6—BA 1.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L（B1）、MS+6—BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L（B2）、MS+6—BA0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L（B3）。
作文 /zuowen/ 将株高2~3 cm的幼苗移至1/2MS+NAA 0.1 mg/L生根培养基中，经过2周培养后，即可生根。
2个月后菊花植株长至5~6 cm，3~8条根时即可进行移栽。
1.2.2 炼苗和移栽。
移栽是组培育苗的重要一环。
由于组培苗的生长环境与外界环境差别很大，幼苗抗病和抗旱等能力较弱，所以特别要注意菊花组培苗移栽初期的管理。
生根完成的幼苗需要先适应2~3 d，即移栽前先把培养基的培养膜打开，放在25 ℃左右的室温中，增加组培苗对外界环境的适应能力。
移栽时，用镊子将组培苗小心地取出，用无菌水将小苗根部的培养基洗净，移栽到蛭石和砂石混合物中，盖上薄膜，使温度、湿度、光照分别达到25 ℃、85％、300 lx。
然后浇灌清水，保持湿润，15 d后移入营养钵，每钵1株。
移栽7 d后喷洒不同浓度的植物营养剂，观察其对观赏菊成活率的影响。
试验根据营养剂浓度不同设5个处理，分别为0.5%（C1）、0.3%（C2）、0.25%（C3）、0.2%（C4），以不添加植物营养剂作对照（CK）。
3次重复，每个处理100株。
1.3 测定项目与方法 1.3.1 株高测定。
第4次营养剂喷洒后10 d，用小尺量取株高，并记录数据。
1.3.2 光合强度测定。
在各处理中选择4株样株，按东西南北各选取1株，方向自下而上5 cm，测定部位为新梢先端第3片成熟无损叶片。
光合速率用便携式光合作用仪（LI～6400，America），配备自然光源在9：0011：00进行测定[8]。
论文代写 1.3.3 根系活力测定。
分别在各组处理中选4株样株，按东南西北方向各1株，采集根部，将根部用蒸馏水洗净，剪下根部，用吸水纸吸去水分，称重0.20 g，采取TTC（2，3，5—氯化三苯基四氮唑）法[9]进行测定。
2 结果与分析 2.1 最佳培养基筛选 2~3周后观察发现，处理A3中愈伤组织紧密，出芽率比处理A1、A2高，于是选用MS+6—BA 0.3 mg/L+NAA 0.1 mg/L作为菊花生芽诱导培养基。
调查发现，处理B3中菊花幼苗较其他培养基的幼苗叶子颜色更加嫩绿宽大，且苗高较整齐。
因此，选用MS+6—BA 0.5 mg/L+NAA 0.1 mg/L作为最佳继代培养基。
2.2 不同浓度的植物营养剂对组培苗移栽成活率的影响 从表1可以看出，喷洒一定浓度的植物营养剂能对组培苗的成活率产生一定的影响，处理C2成活率最高，达95%，较CK增加13.10%。
2.3 不同浓度的植物营养剂对株高的影响 从表2可以看出，喷洒不同浓度的植物营养剂后，会对组培苗的株高以及生长情况带来不同程度的影响，其中处理C2增长幅度最为明显，较CK增加20.06%。
这是因为植物营养剂含有丰富的氮、磷、钾及微量元素，促进了其生长。
而处理C1的株高较CK降低4.71%，说明高浓度的植物营养剂对组培苗的生长具有一定的抑制作用。
毕业论文 2.4 不同浓度的植物营养剂对光合作用的影响 从表3可以看出，不同浓度的植物营养剂可以调节株高和光合作用强度，添加植物营养剂处理的光合作用强度明显高于CK，其中处理C2增长幅度最大，较CK增加20.4%。
2.5 不同浓度的植物营养剂对根系活力的影响 从表4可以看出，喷洒不同浓度的植物营养剂能对组培苗的根系活力产生一定的影响，其中处理C2增长幅度最大，为17.3%，处理C3、C4随着浓度的降低根系活力逐渐降低。
处理C1根系活力较CK降低9.2%，这可能是由于浓度过高，对于根系活力具有一定的抑制作用，影响其吸收 简历大全 /html/jianli/。